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Cas9/sgRNA递送技术及其研究进展 被引量:3
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作者 胡暄 王松 +2 位作者 于璐 张晓鹏 陈薇 《生物工程学报》 CAS CSCD 北大核心 2021年第11期3880-3889,共10页
在与CRISPR/Cas9基因编辑技术相关的临床应用中,Cas9/sgRNA的递送是决定基因编辑治疗效果的关键技术之一。无需转录和翻译过程的Cas9蛋白/sgRNA复合物直接递送形式可能能够提供更高的特异性和安全性。文中通过对Cas9/sgRNA递送技术的研... 在与CRISPR/Cas9基因编辑技术相关的临床应用中,Cas9/sgRNA的递送是决定基因编辑治疗效果的关键技术之一。无需转录和翻译过程的Cas9蛋白/sgRNA复合物直接递送形式可能能够提供更高的特异性和安全性。文中通过对Cas9/sgRNA递送技术的研究现状及其在基因相关疾病治疗中的进展进行简要综述,为新型药物载体的设计和基因治疗的临床应用提供新思路。 展开更多
关键词 cas9/sg RNA递送 纳米载体 基因编辑 基因治疗
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Crispr/Cas9技术在CHO细胞中基因敲除的应用 被引量:3
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作者 孙涛 王佳贤 +1 位作者 李朝东 朱建伟 《中国医药工业杂志》 CAS CSCD 北大核心 2015年第4期418-421,共4页
Crispr/Cas9技术是近年发展起来的基因编辑技术,已经在人、动物、植物等各类细胞中得到广泛应用。本文基于文献和本实验室研究成果,介绍了Crispr/Cas9技术在CHO细胞中运用的基本操作方法,以及与重组蛋白表达相关的基因敲除实例,对可能... Crispr/Cas9技术是近年发展起来的基因编辑技术,已经在人、动物、植物等各类细胞中得到广泛应用。本文基于文献和本实验室研究成果,介绍了Crispr/Cas9技术在CHO细胞中运用的基本操作方法,以及与重组蛋白表达相关的基因敲除实例,对可能遇到的问题做出了技术解释。笔者认为可利用Crispr/Cas9技术对CHO细胞进行改造以创造出新的工程细胞株,为生物药物开发及生产服务。 展开更多
关键词 Crispr/cas9技术 CHO细胞 向导RNA 生物药物研发
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CRISPR/Cas9载体优化及CHD1L条件性敲除肝癌细胞系的构建 被引量:1
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作者 黄丽 刘珊珊 +2 位作者 张晓锋 白银山 刘铭 《中国临床解剖学杂志》 CSCD 北大核心 2020年第1期39-44,共6页
目的利用优化的pLV-Tet3G-CRISPR/Cas9载体系统构建条件性敲除CHD1L的QGY-7703肝癌细胞系,验证敲除效果及其对细胞生物学的影响,为研究CHD1L促肿瘤细胞恶性表型机制提供重要的细胞模型。方法用点突变方法优化pLV-Tet3G-Cas9载体以降低... 目的利用优化的pLV-Tet3G-CRISPR/Cas9载体系统构建条件性敲除CHD1L的QGY-7703肝癌细胞系,验证敲除效果及其对细胞生物学的影响,为研究CHD1L促肿瘤细胞恶性表型机制提供重要的细胞模型。方法用点突变方法优化pLV-Tet3G-Cas9载体以降低其脱靶效应,进而将Cas9改造成eSpCas9;其次,通过筛选获得稳定表达eSpCas9的QGY-7703细胞株;将mCherry基因插入载体pLVXhU6-SgRNA中,获得携带mCherry荧光基因的pLVX-mCherry-hU6-SgRNA载体;设计和筛选特异性靶向CHD1L的SgRNA序列,用重叠PCR方法获得hU6-CHD1L-SgRNA片段,筛选具有CHD1L切割活性的靶点,随后,将其克隆到pLVX-mCherry-hU6-SgRNA载体中;用293FT细胞进行病毒包装,获得慢病毒颗粒;转染7703eSpCas9细胞株,利用Western blot验证Dox诱导下的CHD1L敲除效果,划痕和Transwell实验检测Dox诱导的CHD1L敲除对肝癌细胞生物学功能的影响。结果 pLV-Tet3G-Cas9载体Cas9成功优化为eSpCas9序列;成功构建pLVX-mCherry-hU6-CHD1L-SgRNA载体;通过转染及筛选,获得Dox诱导的CHD1L敲除QGY-7703肝癌细胞系;细胞实验显示Dox可诱导eSpCas9表达,靶向性切割CHD1L,抑制QGY-7703细胞的迁移侵袭。结论成功构建Dox诱导的CHD1L敲除肝癌细胞株,此载体系统可为靶向肿瘤特异性基因研究提供细胞模型。 展开更多
关键词 CRISPR/eSpcas9 CHD1L sgRNA 肝癌细胞
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靶向AML突变的CRISPR/Cas9基因敲除文库构建
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作者 娄琪 张菊 +2 位作者 王洁 张石生 张竞方 《现代生物医学进展》 CAS 2021年第22期4201-4206,4216,共7页
目的:构建靶向约200个AML基因突变的sgRNA基因敲除文库,为进一步探索诱发AML的信号通路网络奠定基础。方法:TCGA对200名AML病人进行了全基因组或全外显子组测序,鉴定出约2000个AML相关基因突变,从中选出了约200个突变两次或以上的基因... 目的:构建靶向约200个AML基因突变的sgRNA基因敲除文库,为进一步探索诱发AML的信号通路网络奠定基础。方法:TCGA对200名AML病人进行了全基因组或全外显子组测序,鉴定出约2000个AML相关基因突变,从中选出了约200个突变两次或以上的基因作为靶向基因;接着,从Brie文库中挑选出相应基因的sgRNA序列,每个基因对应4条sgRNA;利用Gib-son组装酶连接到慢病毒载体内,得到sgRNA文库;之后,采用pSSA荧光素酶基因报告系统鉴定文库sgRNA的切割活性;对文库进行高通量测序鉴定;用慢病毒包装文库,并测定病毒滴度。结果:1、构建了一个靶向约200个AML突变的sgRNA基因敲除文库;2、pSSA荧光素酶基因报告系统鉴定文库sgRNA具有切割活性;3、鉴定的7个单克隆质粒序列完全正确;4、高通量测序鉴定文库丰度和均一性符合要求;5、用慢病毒包装成病毒文库,测定病毒文库滴度为4.4×107符合后续实验要求。结论:成功构建了靶向约200个基因突变的sgRNA敲除文库,可用于大规模地筛选诱发AML的基因突变,为探索AML发生、发展的分子机制以及药物靶点奠定基础。 展开更多
关键词 CRISPR/cas9 sgRNA基因敲除文库 高通量测序 慢病毒包装 AML
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A simple, flexible and high-throughput cloning system for plant genome editing via CRISPR-Cas system 被引量:4
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作者 Hyeran Kim Sang-Tae Kim +8 位作者 Jahee Ryu Min Kyung Choi Jiyeon Kweon Beum-Chang Kang Hyo-Min Ahn Suji Bae Jungeun Kim Jin-Soo Kim Sang-Gyu Kim 《Journal of Integrative Plant Biology》 SCIE CAS CSCD 2016年第8期705-712,共8页
CRISPR-Cas9 system is now widely used to edit a target genome in animals and plants. Cas9 protein derived from Streptococcus pyogenes(Sp Cas9) cleaves double-stranded DNA targeted by a chimeric single-guide RNA(sg ... CRISPR-Cas9 system is now widely used to edit a target genome in animals and plants. Cas9 protein derived from Streptococcus pyogenes(Sp Cas9) cleaves double-stranded DNA targeted by a chimeric single-guide RNA(sg RNA). For plant genome editing, Agrobacterium-mediated T-DNA transformation has been broadly used to express Cas9 proteins and sg RNAs under the control of Ca MV 35 S and U6/U3 promoter, respectively. We here developed a simple and high-throughput binary vector system to clone a 19 20 bp of sg RNA, which binds to the reverse complement of a target locus, in a large T-DNA binary vector containing an Sp Cas9 expressing cassette. Twostep cloning procedures:(1) annealing two target-specific oligonucleotides with overhangs specific to the Aar I restriction enzyme site of the binary vector; and(2) ligating the annealed oligonucleotides into the two Aar I sites of the vector, facilitate the high-throughput production of the positive clones. In addition, Cas9-coding sequence and U6/U3 promoter can be easily exchanged via the GatewayTMsystem and unique Eco RI/Xho I sites on the vector, respectively. We examined the mutation ratio and patterns when we transformed these constructs into Arabidopsis thaliana and a wild tobacco, Nicotiana attenuata. Our vector system will be useful to generate targeted large-scale knock-out lines of model as well as non-model plant. 展开更多
关键词 Aar I-mediated sg RNA cloning CRISPR-cas9 T-DNA binary vector Exchangeable U6/U3 promoter Gateway compatible cas9 cloning
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